Մենք հանդիսանում ենք կապող օղակ հեղինակների և պատվիրատուների միջև:

Մեր կայքում դուք կարող եք պատվիրել նյութեր՝ ուղղիղ կապ հաստատելով մասնագետներից ցանկացածի հետ:
    Տարբեր ածխածնի աղբյուրների ազդեցությունը կաթնաթթվային բակտերիաների համակեցությունների հակասնկային ակտիվության վրա և դրա կապը պրոտեոլիտիկ ակտիվության հետ

    Դիպլոմային | Քիմիա

    Տարբեր ածխածնի աղբյուրների ազդեցությունը կաթնաթթվային բակտերիաների համակեցությունների հակասնկային ակտիվության վրա և դրա կապը պրոտեոլիտիկ ակտիվության հետ

    Էջերի քանակ: 50

    Կոդ: #28498

    25000 դր.




    Բովանդակություն
    Օգտագործված գրականության ցանկ

    ՕԳՏԱԳՈՐԾՎԱԾ ԳՐԱԿԱՆՈՒԹՅՈՒՆ

    1. Баженов Л. Г. и соавт. Роль грибов рода Candida в микробиоценозе желудка при хеликобактериозе. Успехи мед. микологии. 2010. Т. I. С. 8-9.
    2. Бурова С. А. Особенности течения и терапии грибковых инфекций у детей. Доктор. Ру. 2007. - Декабрь. - С. 24-25.
    3. Ahmadova A, Dimitrov-Todorov S, Hadji-Sfaxi I, Choiset Y, Rabesona H, Messaoudi S, Kuliyev A, Gombossy de Melo Franco BD, Chobert J-M, Haertlé T. Antimicrobial and antifungal activities of Lactobacillus curvatus strain isolated from homemade Azerbaijani cheese. Anaerobe. 2013; 20: 42-9.
    4. Akalin A.S. Dairy-derived antimicrobial peptides: Action mechanisms, pharmaceutical uses and production proposals // Trends Food Sci. Tech. – 2014. – Vol. 36. – P. 79-95.
    5. Bazukyan, I., & Matevosyan, L. Antifungal activity of lactic acid bacteria isolated from Armenian dairy products. FEBS Journal, 281, 651 (2014).
    6. Bokulich N.A., Amiranashvili L., Chitchyan K., Ghazanchyan N., Darbinyan K., Gagelidze N., Sadunashvili T., Goginyan V., Kvesitadze G., Torok T., Mills D.A. Microbial biogeography of the transnational fermented milk matsoni // Food. Microbiol. – 2015. – Vol. 50. – P. 12-19.
    7. Bergsson, G., Arnfinnsson, J., Steingrimsson, O. & Thormar, H. In vitro killing of Candida albicans by fatty acids and monoglycerides. Antimicrobial Agents and Chemotherapy 45, 3209-3212 (2012).
    8. Brul, S. & Coote, P. Preservative agents in foods. Mode of action and microbial resistance mechanisms. International Journal of Food Microbiology 50, 1-17 (2015).
    9. Cabo, M. L., Braber, A. F. & Koenraad, P. M. Apparent antifungal activity of several lactic acid bacteria against Penicillium discolor is due to acetic acid in the medium. Journal of Food Protection 65, 1309-1316 (2002).
    10. Collins E. B., Hardt P. Inhibition of Candida albicans by Lactobacillus acidophilus. Journal of Dairy Science, 63, 830–832 (2010).
    11. Corsetti, A., Gobebetti, M., Rossi, J. & Damiani, P. Antimould activity of sourdough lactic acid bacteria: Identification of a mixture of organic acids produced by Lactobacillus sanfrancisco CB1. Applied Microbiology and Biotechnology 50, 253-256 (2011).
    12. Dortu C., Fickers P., Franz C.M.A.P., Ndagano D., Huch M., Holzapfel W.H., Joris B., Thonart P. Characterisation of an antilisterial bacteriocin produced by Lactobacillus sakei CWBI-B1365 isolated from raw poultry meat and determination of factors controlling its production // Probiotics Antimicrob. Proteins. - 2009. – Vol. 1. – P. 75-84.
    13. El-Ghaish S., Ahmadova A., Hadji-Sfaxi I., El Mecherfi K.E., Bazukyan I., Choiset Y., Rabesona H., Sitohy M., Popov Y.G., Kuliev A.A., Mozzi F., Chobert J.M., Haertlé T. Potential use of lactic acid bacteria for reduction of allergenicity and for longer conservation of fermented foods // Trends Food Sci. Tech. - 2011a. – Vol. 22. – P. 509-516.
    14. Fernandez-Espla M.D., Garault P., Monnet V., Rul F. Streptococcus thermophilus cell wall-anchored proteinase: release, purification, and biochemical and genetic characterization // Appl. Environ. Microbiol. - 2000. – Vol. 6. – N 6. – P. 4772-4778.
    15. Hartmann R., Meisel H. Food-derived peptides with biological activity: From research to food applications // Curr. Opin. Biotech. - 2007. - Vol.18. – P. 1-7.
    16. Hayes A., Ross R.P., Fitzgerald G.F., Hill C., Stanton C. Casein-derived antimicrobial peptides generated by Lactobacillus acidophilus DPC6026 // Appl. Environ. Microbiol. - 2006. - Vol. 72. – P.  2260-2264.
    17. Hill S., Gasson M.J. A qualitative screening procedure for the detection of casein hydrolysis by bacteria, using sodium dodecyl sulphate polyacrylamide gel electrophoresis // J. Dairy Res. - 1986. – Vol. 53. - P. 625-629.
    18. Magnusson, J. Antifungal activity of lactic acid bacteria. PhD thesis, Agraria 397, Swedish University of Agricultural Sciences, Uppsala, Sweden (2003).
    19. Magnusson, J., & Schnu¨rer, J. Lactobacillus coryniformis subsp. coryniformis strain Si3 produces a broad-spectrum proteinaceous antifungal compound. Applied and Environmental Microbiology, 67, 1–5 (2001).
    20. Magnusson J., Stro¨m K., Roos S., Sjo¨gren J., Schnu¨rer J. Broad and complex antifungal activity among environmental isolates of lactic acid bacteria. FEMS Microbiology Letters, 219, 129–135 (2010).
    21. Okkers D.J., DicksL.M.T., Silvester M., Joubert J.J., Odendaal H.J. (2003) Characterization of pentocin TV35b, a bacteriocin-like peptide isolated from Lactobacillus pentosus with a fungistatic effect on Candida albicans. J. Appl. Microbiol. 87, 726–734.
    22. Plockova´ M., Chumchalova´ J., Tomanova´ J. (2005) Antifungal activity of Lactobacillus acodophilus CH5 metabolites. Food Sci. 15, 39–48.
    23. Kekessy D. A., Piquet J. D. (2005) New method for detecting bacteriocin production. Applied Microbiology, 20, 282–283.
    24. Osman M. M. (2004) Factors affecting the antifungal properties of Brevibacterium linens. International Dairy Journal, 14, 713–722.
    25. Xanthopoulos V., Petridis D., Tzanetakis N. (2001) Characterization and classification of Streptococcus thermophilus and Lactobacillus delbrueckii subsp. bulgaricus strains isolated from traditional Greek yoghurts on the basis of their technological properties. Journal of Food Science, 66, 747–753.
    26. Roy, U., Grover, S., Neelakantan, S., Batish, V.K., (2001)Mode of inhibition of Aspergillus flavus IARI antifungalsubstance produced by Lactococcus lactis subsp. lactisCHD-28.3. J. Food Sci. Technol. 38, 489–492
    27. Suzuki, H.W., Nomura, M., Morichi, T., (2001) Isolation oflactic acid bacteria which suppress mold growth andshow antifungal action. Milchwiss. 46, 635–639.
    28. Tsakalidou E., Anastasiou R., Vandenberghe I., van Beeumen J., Kalantzoupoulos G. Cell-wall bound proteinase of Lactobacillus delbrueckii subsp. lactis ACA-DC 178: characterization and specificity for β-casein // Appl. Environ. Microbiol. - 2000. – Vol. 65. – P. 2035-2040. 
    29. Tzvetkova I., Dalgalarrondo M., Danova S., Iliev I., Ivanova I., Chobert J.M., Haertlé T. Hydrolysis of major dairy proteins by lactic acid bacteria from Bulgarian yogurts // J. Food Biochem. - 2007. – Vol. 31. – P. 680-702.
    30. Varga J., Z. Peteri, K. Tabori, J. Teren, C. Vagvolgyi. Degradation of ochratoxin A and other mycotoxins by Rhizopus isolates. Int. J. Food Microbiol. 99, 321-328 (2005).
    31. Valence, F., R. Richoux, A. Thierry, A. Palva, and S. Lortal. 1998 Autolysis of Lactobacillus helveticus and Propionibacterium freudenreichii in Swiss cheeses: first evidence by using species-specific lysis markers. J. Dairy Res. 65:609–620.
    32. Venturini, M. E., Blanco, D., & Oria, R. In vitro antifungal activity of several compounds against Penicillium expansum. Journal of Food Protection, 65, 934–939 (2002).
    33. Wallace, J. M., and P. F. Fox. 1997. Effect of adding free amino acids to cheddar cheese curd on proteolysis, flavour and texture development. Int. Dairy J. 7:157–167. (2007).

     

    1. Wiseman D. W. & Marth E. H. Growth and aflatoxin production by Aspergillus parasiticus when in the presence of Streptococcus lactis. Mycopathologia, 73, 49-56(2007).
    2. Wilkinson, M. G., T. P. Guinee, and P. F. Fox. 1994. Factors which may influence the determination of autolysis of starter bacteria during cheddar cheese ripening. Int. Dairy J. 4:141–160(2009).

     

    1. Wolfe, B. E., J. E. Button, M. Santarelli, and R. J. Dutton. 2014. Cheese rind communities provide tractable systems for in situ and in vitro studies of microbial diversity. Cell 158:422–433(2007).

     

    1. Woolford, M. K. Microbiological screening of the straight chain fatty acids (C1-C12) as potential silage additives. Journal of the Science of Food and Agriculture 26, 219-228 (2009).

     

     

    ԲՈՎԱՆԴԱԿՈՒԹՅՈՒՆ.. 4

    ՆԵՐԱԾՈՒԹՅՈՒՆ.. 5

    ԳԼՈՒԽ 1. 7

    ԳՐԱԿԱՆ ԱԿՆԱՐԿ.. 7

    1.1 Մերանային և ոչ մերանային կաթնաթթվային բակտերիաների փոխազդեցությունը պանրային մթերքում.. 7

    1.1.1 Կաթնամթերքում մանրէների տեղը. 7

    1.1.3 Ոչ մերանային կուլտուրաների դերը պանրում. 9

    1.1.4 Մերանային և ոչ մերանային կուլտուրաների նյութափոխանակային ուղիները պանրի արտադրության մեջ. 11

    1.2 Ածխաջրային փոխանակությունում համագործակցությունը և մրցակցությունը. 11

    1.3 Սպիտակուցների, պեպտիդների և ամինաթթուների փոխազդեցությունը և քայքայումը. 13

    1.4 Լիպոլիզ և ճարպաթթուների փոխակերպում.. 15

    1.5 Մերանների աուտոլիզը. 17

    1.6 Կաթնաթթվային բակտերիաների հակասնկային ակտիվությունը. 18

    1.6.1 ԿԹԲ հակասնկային ակտիվության վրա ազդող գործոնները. 19

    Ջերմաստիճան և աճեցման ժամանակահատված. 19

    1.6.2 pH ազդեցություն. 20

    1.6.3 Սննդանյութերի ազդեցություն. 21

    1.6.4 Աճեցման միջավայր. 22

    1.7 Կաթնաթթվային բակտերիաների պրոտեոլիտիկ համակարգը. 22

    Գլուխ II 28

    Նյութեր Եվ մեթոդիկա.. 28

    2.1 Հետազոտման օբյեկտներ. 28

    2.2 Օգտագործված սննդամիջավայրերը՝ 29

    2.3 Սպորների հաշվարկը հաշվիչ խցիկների կիրառմամբ. 30

    2.4 Հակասնկային ակտիվության որոշումը. 32

    2.5 Հակասնկային ակտիվության կախվածությունը pH-ից. 33

    2.6 Հակասնկային ակտիվության կախվածությունը ջերմաստիճանից. 33

    2.7 ԿԹԲ պրոտեոլիտիկ ակտիվության որոշումը. 33

    Գլուխ III 35

    Արդյունքները ԵՎ քննարկումները. 35

    ՕԳՏԱԳՈՐԾՎԱԾ ԳՐԱԿԱՆՈՒԹՅՈՒՆ   47

    Եթե կայքում տեղադրված ինֆորմացիյան բավարար չէ հասկանալու համար նյութի պարունակությունը ուղարկեք հարցում և մեր մասնագետները կարճ ժամանակում կուղարկեն Ձեզ անրաժեշտ ինֆորմացիյան:
    Ուղարկել հարցում

    Եթե այս նյութը այն չէ ինչ դուք փնտրում էիք, ապա դուք կարող եք այն պատվիրել www.referat.am կայքում գրանցված մասնագետներից ցանկացածին շատ մատչելի և հուսալի (ողղիղ կապ մասնագետի հետ) եղանակներով:
    Պատվիրել նյութ

    Գնել նյութը


    Լրացրեք բոլոր դաշտերը
    Ձեր պատվերը հաջողությամբ ընդունված է: Մեր մասնագետները կարճ ժամանակ հետո կապ կհաստատեն Ձեզ հետ:

    referat.am kursayinner referatner diplomayinner tezer պատվիրել աշխատանքներ description_1 <h1><a name="_Toc513928028">ՕԳՏԱԳՈՐԾՎԱԾ</a> ԳՐԱԿԱՆՈՒԹՅՈՒՆ</h1> <ol> <li><em>Баженов Л. Г.</em> и соавт. Роль грибов рода <em>Candida</em> в микробиоценозе желудка при хеликобактериозе. Успехи мед. микологии. 2010. Т. I. С. 8-9.</li> <li><em>Бурова С. А.</em> Особенности течения и терапии грибковых инфекций у детей. Доктор. Ру. 2007. - Декабрь. - С. 24-25.</li> <li>Ahmadova A, Dimitrov-Todorov S, Hadji-Sfaxi I, Choiset Y, Rabesona H, Messaoudi S, Kuliyev A, Gombossy de Melo Franco BD, Chobert J-M, Haertl&eacute; T. Antimicrobial and antifungal activities of <em>Lactobacillus curvatus</em> strain isolated from homemade Azerbaijani cheese. Anaerobe. 2013; 20: 42-9.</li> <li>Akalin A.S. Dairy-derived antimicrobial peptides: Action mechanisms, pharmaceutical uses and production proposals // Trends Food Sci. Tech. &ndash; 2014. &ndash; Vol. 36. &ndash; P. 79-95.</li> <li>Bazukyan, I., &amp; Matevosyan, L. Antifungal activity of lactic acid bacteria isolated from Armenian dairy products. FEBS Journal, 281, 651 (2014).</li> <li>Bokulich N.A., Amiranashvili L., Chitchyan K., Ghazanchyan N., Darbinyan K., Gagelidze N., Sadunashvili T., Goginyan V., Kvesitadze G., Torok T., Mills D.A. Microbial biogeography of the transnational fermented milk matsoni // Food. Microbiol. &ndash; 2015. &ndash; Vol. 50. &ndash; P. 12-19.</li> <li>Bergsson, G., Arnfinnsson, J., Steingrimsson, O. &amp; Thormar, H. <em>In vitro</em> killing of <em>Candida albicans </em>by fatty acids and monoglycerides. Antimicrobial Agents and Chemotherapy 45, 3209-3212 (2012).</li> <li>Brul, S. &amp; Coote, P. Preservative agents in foods. Mode of action and microbial resistance mechanisms. International Journal of Food Microbiology 50, 1-17 (2015).</li> <li>Cabo, M. L., Braber, A. F. &amp; Koenraad, P. M. Apparent antifungal activity of several lactic acid bacteria against <em>Penicillium discolor </em>is due to acetic acid in the medium. Journal of Food Protection 65, 1309-1316 (2002).</li> <li>Collins E. B., Hardt P. Inhibition of <em>Candida albicans </em>by <em>Lactobacillus acidophilus</em>. Journal of Dairy Science, 63, 830&ndash;832 (2010).</li> <li>Corsetti, A., Gobebetti, M., Rossi, J. &amp; Damiani, P. Antimould activity of sourdough lactic acid bacteria: Identification of a mixture of organic acids produced by <em>Lactobacillus sanfrancisco </em>CB1. Applied Microbiology and Biotechnology 50, 253-256 (2011).</li> <li>Dortu C., Fickers P., Franz C.M.A.P., Ndagano D., Huch M., Holzapfel W.H., Joris B., Thonart P. Characterisation of an antilisterial bacteriocin produced by <em>Lactobacillus sakei</em> CWBI-B1365 isolated from raw poultry meat and determination of factors controlling its production // Probiotics Antimicrob. Proteins. - 2009. &ndash; Vol. 1. &ndash; P. 75-84.</li> <li>El-Ghaish S., Ahmadova A., Hadji-Sfaxi I., El Mecherfi K.E., Bazukyan I., Choiset Y., Rabesona H., Sitohy M., Popov Y.G., Kuliev A.A., Mozzi F., Chobert J.M., Haertl&eacute; T. Potential use of lactic acid bacteria for reduction of allergenicity and for longer conservation of fermented foods // Trends Food Sci. Tech. - 2011a. &ndash; Vol. 22. &ndash; P. 509-516.</li> <li>Fernandez-Espla M.D., Garault P., Monnet V., Rul F. <em>Streptococcus thermophilus</em> cell wall-anchored proteinase: release, purification, and biochemical and genetic characterization // Appl. Environ. Microbiol. - 2000. &ndash; Vol. 6. &ndash; N 6. &ndash; P. 4772-4778.</li> <li>Hartmann R., Meisel H. Food-derived peptides with biological activity: From research to food applications // Curr. Opin. Biotech. - 2007. - Vol.18. &ndash; P. 1-7.</li> <li>Hayes A., Ross R.P., Fitzgerald G.F., Hill C., Stanton C. Casein-derived antimicrobial peptides generated by <em>Lactobacillus acidophilus </em>DPC6026 // Appl. Environ. Microbiol.<strong> - </strong>2006.<strong> - </strong>Vol. 72. &ndash; P.&nbsp; 2260-2264.</li> <li>Hill S., Gasson M.J. A qualitative screening procedure for the detection of casein hydrolysis by bacteria, using sodium dodecyl sulphate polyacrylamide gel electrophoresis // J. Dairy Res. - 1986. &ndash; Vol. 53. - P. 625-629.</li> <li>Magnusson, J. Antifungal activity of lactic acid bacteria. PhD thesis, Agraria 397, Swedish University of Agricultural Sciences, Uppsala, Sweden (2003).</li> <li>Magnusson, J., &amp; Schnu&uml;rer, J. <em>Lactobacillus coryniformis</em> subsp. <em>coryniformis</em> strain Si3 produces a broad-spectrum proteinaceous antifungal compound. Applied and Environmental Microbiology, 67, 1&ndash;5 (2001).</li> <li>Magnusson J., Stro&uml;m K., Roos S., Sjo&uml;gren J., Schnu&uml;rer J. Broad and complex antifungal activity among environmental isolates of lactic acid bacteria. FEMS Microbiology Letters, 219, 129&ndash;135 (2010).</li> <li>Okkers D.J., DicksL.M.T., Silvester M., Joubert J.J., Odendaal H.J. (2003) Characterization of pentocin TV35b, a bacteriocin-like peptide isolated from Lactobacillus pentosus with a fungistatic effect on Candida albicans. J. Appl. Microbiol. 87, 726&ndash;734.</li> <li>Plockova&acute; M., Chumchalova&acute; J., Tomanova&acute; J. (2005) Antifungal activity of <em>Lactobacillus acodophilus</em> CH5 metabolites. Food Sci. 15, 39&ndash;48.</li> <li>Kekessy D. A., Piquet J. D. (2005) New method for detecting bacteriocin production. Applied Microbiology, 20, 282&ndash;283.</li> <li>Osman M. M. (2004) Factors affecting the antifungal properties of Brevibacterium linens. International Dairy Journal, 14, 713&ndash;722.</li> <li>Xanthopoulos V., Petridis D., Tzanetakis N. (2001) Characterization and classification of <em>Streptococcus thermophilus</em> and <em>Lactobacillus delbrueckii subsp. bulgaricus</em> strains isolated from traditional Greek yoghurts on the basis of their technological properties. Journal of Food Science, 66, 747&ndash;753.</li> <li>Roy, U., Grover, S., Neelakantan, S., Batish, V.K., (2001)Mode of inhibition of <em>Aspergillus flavus </em>IARI antifungalsubstance produced by <em>Lactococcus lactis</em> subsp. <em>lactis</em>CHD-28.3. J. Food Sci. Technol. 38, 489&ndash;492</li> <li>Suzuki, H.W., Nomura, M., Morichi, T., (2001) Isolation oflactic acid bacteria which suppress mold growth andshow antifungal action. Milchwiss. 46, 635&ndash;639.</li> <li>Tsakalidou E., Anastasiou R., Vandenberghe I., van Beeumen J., Kalantzoupoulos G. Cell-wall bound proteinase of <em>Lactobacillus delbrueckii </em>subsp. <em>lactis </em>ACA-DC 178: characterization and specificity for &beta;-casein // Appl. Environ. Microbiol. - 2000. &ndash; Vol. 65. &ndash; P. 2035-2040.&nbsp;</li> <li>Tzvetkova I., Dalgalarrondo M., Danova S., Iliev I., Ivanova I., Chobert J.M., Haertl&eacute; T. Hydrolysis of major dairy proteins by lactic acid bacteria from Bulgarian yogurts // J. Food Biochem. - 2007. &ndash; Vol. 31. &ndash; P. 680-702.</li> <li>Varga J., Z. Peteri, K. Tabori, J. Teren, C. Vagvolgyi. Degradation of ochratoxin A and other mycotoxins by <em>Rhizopus </em>isolates. Int. J. Food Microbiol. 99, 321-328 (2005).</li> <li>Valence, F., R. Richoux, A. Thierry, A. Palva, and S. Lortal. 1998 Autolysis of <em>Lactobacillus helveticus </em>and <em>Propionibacterium freudenreichii</em> in Swiss cheeses: first evidence by using species-specific lysis markers. J. Dairy Res. 65:609&ndash;620.</li> <li>Venturini, M. E., Blanco, D., &amp; Oria, R. <em>In vitro</em> antifungal activity of several compounds against <em>Penicillium expansum</em>. Journal of Food Protection, 65, 934&ndash;939 (2002).</li> <li>Wallace, J. M., and P. F. Fox. 1997. Effect of adding free amino acids to cheddar cheese curd on proteolysis, flavour and texture development. Int. Dairy J. 7:157&ndash;167. (2007).</li> </ol> <p>&nbsp;</p> <ol> <li>Wiseman D. W. &amp; Marth E. H. Growth and aflatoxin production by <em>Aspergillus parasiticus</em> when in the presence of <em>Streptococcus lactis</em>. Mycopathologia, 73, 49-56(2007).</li> <li>Wilkinson, M. G., T. P. Guinee, and P. F. Fox. 1994. Factors which may influence the determination of autolysis of starter bacteria during cheddar cheese ripening. Int. Dairy J. 4:141&ndash;160(2009).</li> </ol> <p>&nbsp;</p> <ol> <li>Wolfe, B. E., J. E. Button, M. Santarelli, and R. J. Dutton. 2014. Cheese rind communities provide tractable systems for in situ and in vitro studies of microbial diversity. Cell 158:422&ndash;433(2007).</li> </ol> <p>&nbsp;</p> <ol> <li>Woolford, M. K. Microbiological screening of the straight chain fatty acids (C1-C12) as potential silage additives. Journal of the Science of Food and Agriculture 26, 219-228 (2009).</li> </ol> <p style="margin-left:14.2pt">&nbsp;</p> description_2 <h1>&nbsp;</h1> <p><a href="#_Toc513927998">ԲՈՎԱՆԴԱԿՈՒԹՅՈՒՆ.. 4</a></p> <p><a href="#_Toc513927999">ՆԵՐԱԾՈՒԹՅՈՒՆ.. 5</a></p> <p><a href="#_Toc513928000">ԳԼՈՒԽ 1. 7</a></p> <p><a href="#_Toc513928001">ԳՐԱԿԱՆ ԱԿՆԱՐԿ.. 7</a></p> <p><a href="#_Toc513928002">1.1 Մերանային և ոչ մերանային կաթնաթթվային բակտերիաների փոխազդեցությունը պանրային մթերքում.. 7</a></p> <p><a href="#_Toc513928003">1.1.1 Կաթնամթերքում մանրէների տեղը. 7</a></p> <p><a href="#_Toc513928004">1.1.3 Ոչ մերանային կուլտուրաների դերը պանրում. 9</a></p> <p><a href="#_Toc513928005">1.1.4 Մերանային և ոչ մերանային կուլտուրաների նյութափոխանակային ուղիները պանրի արտադրության մեջ. 11</a></p> <p><a href="#_Toc513928006">1.2 Ածխաջրային փոխանակությունում համագործակցությունը և մրցակցությունը. 11</a></p> <p><a href="#_Toc513928007">1.3 Սպիտակուցների, պեպտիդների և ամինաթթուների փոխազդեցությունը և քայքայումը. 13</a></p> <p><a href="#_Toc513928008">1.4 Լիպոլիզ և ճարպաթթուների փոխակերպում.. 15</a></p> <p><a href="#_Toc513928009">1.5 Մերանների աուտոլիզը. 17</a></p> <p><a href="#_Toc513928010">1.6 Կաթնաթթվային բակտերիաների հակասնկային ակտիվությունը. 18</a></p> <p><a href="#_Toc513928011">1.6.1 ԿԹԲ հակասնկային ակտիվության վրա ազդող գործոնները. 19</a></p> <p><a href="#_Toc513928012">Ջերմաստիճան և աճեցման ժամանակահատված. 19</a></p> <p><a href="#_Toc513928013">1.6.2 pH ազդեցություն. 20</a></p> <p><a href="#_Toc513928014">1.6.3 Սննդանյութերի ազդեցություն. 21</a></p> <p><a href="#_Toc513928015">1.6.4 Աճեցման միջավայր. 22</a></p> <p><a href="#_Toc513928016">1.7 Կաթնաթթվային բակտերիաների պրոտեոլիտիկ համակարգը. 22</a></p> <p><a href="#_Toc513928017">Գլուխ II 28</a></p> <p><a href="#_Toc513928018">Նյութեր Եվ մեթոդիկա.. 28</a></p> <p><a href="#_Toc513928019">2.1 Հետազոտման օբյեկտներ. 28</a></p> <p><a href="#_Toc513928020">2.2 Օգտագործված սննդամիջավայրերը՝ 29</a></p> <p><a href="#_Toc513928021">2.3 Սպորների հաշվարկը հաշվիչ խցիկների կիրառմամբ. 30</a></p> <p><a href="#_Toc513928022">2.4 Հակասնկային ակտիվության որոշումը. 32</a></p> <p><a href="#_Toc513928023">2.5 Հակասնկային ակտիվության կախվածությունը pH-ից. 33</a></p> <p><a href="#_Toc513928024">2.6 Հակասնկային ակտիվության կախվածությունը ջերմաստիճանից. 33</a></p> <p><a href="#_Toc513928025">2.7 ԿԹԲ պրոտեոլիտիկ ակտիվության որոշումը. 33</a></p> <p><a href="#_Toc513928026">Գլուխ III 35</a></p> <p><a href="#_Toc513928027">Արդյունքները ԵՎ քննարկումները. 35</a></p> <p><a href="#_Toc513928028">ՕԳՏԱԳՈՐԾՎԱԾ ԳՐԱԿԱՆՈՒԹՅՈՒՆ&nbsp;&nbsp; 47</a></p> title_arm Տարբեր ածխածնի աղբյուրների ազդեցությունը կաթնաթթվային բակտերիաների համակեցությունների հակասնկային ակտիվության վրա և դրա կապը պրոտեոլիտիկ ակտիվության հետ title_eng convertot_1 Tarber acxacni axbyurneri azdecutyun@ katnattvayin bakterianeri hamakecutyunneri hakasnkayin aktivutyan vra EV dra kap@ proteolitik aktivutyan het convertot_2 Tarber acxacni axbyurneri azdecutyun@ katnattvayin bakterianeri hamakecutyunneri hakasnkayin aktivutyan vra EV dra kap@ proteolitik aktivutyan het convertot_3 Tarber acxacni axbyurneri azdecutyun@ katnattvayin bakterianeri hamakecutyunneri hakasnkayin aktivutyan vra EV dra kap@ proteolitik aktivutyan het convertot_4 Tarber acxacni axbyurneri azdecutyun@ katnattvayin bakterianeri hamakecutyunneri hakasnkayin aktivutyan vra EV dra kap@ proteolitik aktivutyan het convertot_5 Tarber acxacni axbyurneri azdecutyun@ katnattvayin bakterianeri hamakecutyunneri hakasnkayin aktivutyan vra EV dra kap@ proteolitik aktivutyan het convertot_6 Tarber acxacni axbyurneri azdecutyuny katnattvayin bakterianeri hamakecutyunneri hakasnkayin aktivutyan vra EV dra kapy proteolitik aktivutyan het convertot_7 Tarber ackhacni axbyurneri azdecutyun@ katnattvayin bakterianeri hamakecutyunneri hakasnkayin aktivutyan vra EV dra kap@ proteolitik aktivutyan het convertot_8 Tarber acxacni aghbyurneri azdecutyun@ katnattvayin bakterianeri hamakecutyunneri hakasnkayin aktivutyan vra EV dra kap@ proteolitik aktivutyan het convertot_9 Tarber acxacni axbyurneri azdecutyun@ katnattvayin bakterianeri hamakecutyunneri hakasnkayin aktivutyan vra EV dra kap@ proteolitik aktivutyan het convertot_10 Tarber atskhatsni aghbyurneri azdecutyuny katnattvayin bakterianeri hamakecutyunneri hakasnkayin aktivutyan vra EV dra kapy proteolitik aktivutyan het convertot_11 Tarber acxacni axbyurneri azdecutyun@ katnattvayin bakterianeri hamakecutyunneri hakasnkayin aktivutyan vra EV dra kap@ proteolitik aktivutyan het convertot_13 Tarber acxacni axbjurneri azdecutjun@ katnattvajin bakterianeri hamakecutjunneri hakasnkajin aktivutjan vra EV dra kap@ proteolitik aktivutjan het convertot_14 Tarber acxacni axbyurneri azdecutyun@ katnattvayin bakterianeri hamakecutyunneri hakasnkayin aktivutyan vra EV dra kap@ prwtewlitik aktivutyan het convertot_15 Tarber acxacni axbyurneri azdecutyun@ katnattvayin bakterianeri hamakecutyunneri hakasnkayin aktivutyan vra EV dra kap@ proteolitik aktivutyan het convertot_16 Tarber acxacni axbyyrneri azdecytyyn@ katnattvayin bakterianeri hamakecytyynneri hakasnkayin aktivytyan vra EV dra kap@ proteolitik aktivytyan het convertot_17 Tarber acxacni axbyurneri azdecutyun@ katnattvayin bakterianeri hamakecutyunneri hakasnkayin aktivutyan vra EV dra kap@ proteolitik aktivutyan het convertot_18 Tarber acxacni axbyurneri azdecutyun@ katnattvayin bakterianeri hamakecutyunneri hakasnkayin aktivutyan vra YEV dra kap@ proteolitik aktivutyan het